徐桂萍1赵萱2付鹃2
1新疆医院麻醉科,乌鲁木齐;2新疆医科大学研究生院,乌鲁木齐
国际麻醉学与复苏杂志,,41(08):-.
DOI:10./cma.j.cn--
基金项目
国家自然科学基金()
ORIGINALARTICLES
为探讨沉默信息调节因子1(SIRT1)对核因子E2相关因子2(Nrf2)/血红素氧合酶?1(HO?1)信号通路的影响及RSV的保护机制,本研究拟通过建立心肌缺血/再灌注损伤(MI/RI)模型,观察SIRT1、Nrf2、HO?1的变化,进而阐明MI/RI的发生机制及白藜芦醇(RSV)保护机制。
1材料与方法
1.1 实验动物
健康雄性SD大鼠60只,体重~g,由新疆医院动物实验中心提供。所有实验大鼠适应性饲养2周,12h昼夜交替,室温25~28℃、60%湿度下饲养。
1.2 模型制备
参照文献的方法制备大鼠MI/RI模型。禁食、禁饮10h,腹腔注射1%戊巴比妥钠50mg/kg麻醉,仰卧位固定行气管插管后,连接MS小动物呼吸机行机械通气,右侧颈总动脉插管,连接监护仪,连续监测Ⅱ型导联ECG、MAP、心率、心率与收缩压的乘积(RPP)(SBP×心率)。于左胸第4、5肋间处开胸,撑开器暴露心脏,切开心包,显微镜下在左心耳下缘2mm处,用6?0带针线穿过,两端套线圈,结扎冠状动脉,当结扎线远端心肌组织颜色苍白及ECG显示ST段弓背抬高或压低0.1mV为缺血成功标志。结扎30min后,松开结扎线,以抬高的ST段下降1/2为再灌注成功的标志。
1.3 分组及处理
采用随机数字表法将60只大鼠分为4组(每组15只):假手术组(S组)、缺血/再灌注组(I/R组)、白藜芦醇组(R组)、白藜芦醇+ex组(RE组)。S组只开胸,不结扎冠状动脉;R组、RE组于术前7d腹腔注射RSV15mg/kg,连续7d,1次/d。RE组于缺血前15min尾静脉注射SIRT1抑制剂ex1μg/kg。
1.4 血流动力学监测
记录缺血前(T1)、再灌注min(T2)时的MAP、心率、RPP。
1.5 2,3,5?氯化三苯基四氮唑(TTC)法检测心肌梗死面积
T2时,各组随机取5只大鼠,重新结扎左冠状动脉前降支,尾静脉注射伊文蓝3ml,待大鼠全身蓝染时,立即处死大鼠并取出心脏,用PBS液多次冲洗,?20℃冰箱保存min,将冷冻的心肌沿心脏长轴方向切成厚度约2mm的薄片,用TTC染料进行染色,37℃避光孵育15min,PBS液冲洗3次,中性甲醛固定15min。心肌梗死区被染成灰白色,缺血区染成红色,非缺血区染成蓝色。心肌梗死面积以梗死心肌占缺血危险区心肌面积百分比表示。
1.6 H?E染色检测
T2时,每组取5只大鼠,取左心室心肌组织,置于10%中性甲醛中固定、脱水、石蜡包埋、制备切片,厚约4μm,一部分石蜡切片行常规H?E染色,光镜下(×)观察心肌病理学结果。
1.7 ELISA法检测血清乳酸脱氢酶(LDH)、肌酸激酶同工酶(CK?MB)水平
T2时,颈总动脉取血3ml,离心后取上清液(离心半径12cm,r/min,离心10min)。采用ELISA法检测血清LDH、CK?MB水平。
1.8 硫代巴比妥酸法及*嘌呤氧化酶法检测心肌丙二醛(MDA)含量和超氧化物歧化酶(SOD)活性
T2时,取少量左心室心肌组织,置于液氮罐中速冻后,于?80℃低温冰箱中保存;取冻存的心肌组织制备10%组织匀浆,采用硫代巴比妥酸法测定心肌MDA含量,采用*嘌呤氧化酶法测定SOD活性。严格按照试剂盒操作步骤进行测定。
1.9 PCR法检测心肌SIRT1、Nrf2、HO?1mRNA水平
T2时取左心室心肌组织mg,采用RT?PCR法检测心肌SIRT1mRNA、Nrf2mRNA、HO?1mRNA水平。采用RNA提取试剂盒提取心肌组织RNA,然后将RNA进行逆转录,作为下一步PCR模板,最后按照RT?PCR说明书进行操作。引物顺序:SIRT1,上游引物5′?AGGCGGATTTCTGAGTTCGA?3′,下游引物5′?CGTCCCTTGTAATGTTTCCC?3′;Nrf2,上游引物5′?TGGCAGAGACATTCCCATTTGTA?3′,下游引物5′?ATCAGTCATGGCCGTCTCCAG?3′;HO?1,上游引物5′?AGGTGCACTCCGTGCAGAG?3′,下游引物5′?TCCAGGGCCGTATAGATATGGTACA?3′。反应条件:94℃s、92℃30s、54℃30s、70℃30s,连续36个循环,采用2?△△Cr法计算SIRT1,Nrf2、HO?1mRNA的相对表达量。
1.10 Westernblot法检测心肌SIRT1、Nrf2、HO?1蛋白水平
再灌注取血后,处死大鼠取下心脏,取左心室心肌组织mg,严格按照总蛋白提取试剂盒说明进行总蛋白提取。取50μg总蛋白进行电泳、转膜,用含5%脱脂奶粉的缓冲液37℃封闭2h。分别加入相应的一抗,SIRT1、Nrf2、HO?1,稀释度均为1∶0,4℃孵育过夜。TBST漂洗3次,加入二抗,37℃孵育1h,Tris缓冲液吐温20(TBST)漂洗3次,电化学发光显影。用ImageJ系统对印记条带进行灰度分析,以目的蛋白条带与β?actin条带灰度值的比值反映目的蛋白表达水平。
2结果
2.1 各组大鼠血流动力学指标比较
I/R组、R组、RE组T2时心率、MAP、RPP低于T1(P0.05);T2时I/R组、RE组心率、MAP、RPP低于R组(P0.05)。见表1。
2.2 各组大鼠心肌梗死面积百分比和血清LDH、CK?MB水平比较
与S组比较,I/R组、R组、RE组心肌梗死面积百分比和血清LDH、CK?MB水平增加(P0.05);与R组比较,I/R组和RE组心肌梗死面积百分比和血清LDH、CK?MB水平增加(P0.05)。见表2。
2.3 各组大鼠心肌组织学变化比较
光镜下,S组心肌纤维排列整齐,结构完整,横纹清晰,心肌细胞无水肿,未见炎性细胞浸润;I/R组和RE组心肌纤维排列杂乱,横纹消失,心肌纤维成片断裂,间质血管充盈扩张,细胞核固缩现象明显,炎性细胞浸润;R组细胞排列相对整齐,无片状心肌纤维断裂现象,偶见细胞核固缩,病理学损伤较I/R组和RE组均减轻;RE组较R组心肌纤维排列杂乱,核固缩现象明显,炎性细胞浸润明显。见图1。
2.4 各组大鼠心肌MDA含量和SOD活性比较
与S组比较,I/R组、R组、RE组心肌MDA含量增加、SOD活性降低(P0.05),与R组比较,I/R组、RE组大鼠心肌MDA含量增加、SOD活性降低(P0.05)。见表3。
2.5 各组大鼠心肌SIRT1mRNA、Nrf2mRNA、HO?1mRNA水平比较
与S组比较,I/R组、R组、RE组心肌SIRT1mRNA、Nrf2mRNA、HO?1mRNA水平上调(P0.05);与R组比较,I/R组、RE组大鼠心肌SIRT1mRNA、Nrf2mRNA、HO?1mRNA水平下调(P0.05)。见表4。
2.6 各组大鼠心肌SIRT1、Nrf2、HO?1蛋白水平比较
与S组比较,I/R组、R组、RE组心肌SIRT1、Nrf2、HO?1蛋白水平上调(P0.05);与R组比较,I/R组、RE组心肌SIRT1、Nrf2、HO?1蛋白水平下调(P0.05)。见表5、图2。
3讨论
本研究结果显示,I/R组大鼠心肌细胞MDA含量升高,SOD的活性下降,同时血清LDH、CK?MB水平升高,心肌出现病理损害,说明I/RI时产生的氧化应激反应导致心肌细胞损伤。与I/R组比较,R大鼠心肌MDA含量降低,SOD活性增加,同时血清LDH、CK?MB水平降低,心肌梗死面积百分比也有所降低,表明RSV在一定程度上减轻了大鼠MI/RI所造成的氧化应激反应,改善了I/RI后的血流动力学变化,对减轻心肌细胞损伤程度等方面起到重要保护作用,这与之前的研究结果一致。
在本研究中,在假手术组中,SIRT1mRNA及蛋白均少量表达,且MI/RI后SIRT1mRNA及蛋白表达均上调,说明I/R可以激活SIRT1的表达,提示SIRT1对I/R导致的心肌损伤起保护作用,但这种适应性调节不足以缓解I/RI,经过RSV处理后,SIRT1mRNA及蛋白表达进一步增加,心肌病理损伤减轻,进一步证实RSV通过增强SIRT1的表达产生心肌保护作用。Nrf2作为一种内源性抗氧化因子,在静息条件下,Nrf2与细胞骨架相关蛋白Keapl结合存在于细胞质中,处于失活状态。在I/RI过程中,大量氧自由基产生使组织处于氧化应激条件下,Nrf2被激活,从细胞质转运至细胞核,调控下游抗氧化因子如HO?1等基因的表达。
在本研究中,在I/R前给予RSV增加心肌表达SIRT1,同时我们发现,Nrf2、HO?1mRNA及蛋白均增加,同时反映氧化应激严重程度的指标——MDA相应降低,反映抗氧自由基能力指标——SOD相应上调。为明确SIRT1与Nrf2/HO?1信号通路的关系,本实验进一步使用SIRT1抑制剂ex后,发现ex不仅使SIRT1mRNA和蛋白的表达降低,也可使Nrf2、HO?1mRNA和蛋白的表达水平同步下调,加剧氧化应激反应,并抑制RSV的心肌保护作用。提示SIRT1可能在MI/RI中对Nrf2/HO?1信号通路产生调节作用,且RSV减轻MI/RI的机制可能通过激活SIRT1的表达进一步激活Nrf2/HO?1信号通路有关。
如果您对本文感兴趣,可登录我刊投稿系统平台(